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血小板GPⅡb/Ⅲa拮抗剂RGDS和钙通道拮抗剂Nifedipine对GPIIb/IIIa活化的影响

  • 投稿少林
  • 更新时间2015-09-16
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杨国雷1 尹松梅2 张复华1 牛国敏1 凌奕文1

1.南方医科大学附属南海医院血液内科,广东佛山 528200; 2.中山大学附属第二医院血液内科,广东广州 510120

[摘要] 目的 探讨GPⅡb/Ⅲa 拮抗剂RGDS和钙通道拮抗剂Nifedipine对ADP诱导的血小板GPⅡb/Ⅲa活化的影响。方法GP II b/11I a特异性抗体PAC-1标记活化GP II b/11I a,流式细胞仪检测静息及 ADP( 5μmol/L)诱导的血小板PAC-1表达率。结果 静息状态下的血小板PAC-1表达率为(0.80±0.85)%;在ADP(5 μmol/L)激动下,PAC-1表达率为(77.27±9.47) %;RGDS以浓度依赖性的方式抑制PAC-1 表达率,IC50值为206 μmol/L;Nifedipine能以浓度依赖性的方式抑制PAC-1 表达率,IC50值为178 μmol/L;RGDS联合Nifedipine对PAC-1 表达的联合抑制率为(60.15±16.35)%,二者的交互效应差异有统计学意义(P<0.05)。 结论GPIIb/IIIa受体拮抗剂RGDS和Ca2+拮抗剂Nifedipine均抑制ADP诱导的血小板GPIIb/IIIa活化,其抑制作用呈浓度依赖性,随拮抗剂浓度增加抑制作用增强;两者对血小板GPIIb/IIIa活化的抑制存在协同作用。

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关键词 血小板活化;GPⅡb/Ⅲa拮抗剂;钙通道拮抗剂;PAC-1

[中图分类号] R96[文献标识码] A[文章编号] 1674-0742(2014)04(a)-0014-02

血小板膜糖蛋白GPⅡb/Ⅲa复合物活化,空间构型改变,暴露纤维蛋白结合位点,是血小板活化的关键。Ca2+是GPⅡb/Ⅲa复合物作为一个完整的功能单位存在的必要因素,同时参与GPⅡb/Ⅲa复合物构型改变及活化[1]。该研究2010年7月—2011年3月期间采用GPⅡb/Ⅲa 拮抗剂RGDS(Arg-Gly-Asp-Ser)和钙通道拮抗剂Nifedipine两种药物,旨在观察二者对ADP诱导的血小板GPⅡb/Ⅲa活化的影响,现报道如下。

1资料与方法

1.1一般资料

于该院体检中心体检的健康体检者24人,20~40岁,平均26岁,性别不限,近1个月无用药史;排除冠心病、高血压、糖尿病患者及妊娠女性。空腹 12 h静脉采血, ACD液(1:9)抗凝。

1.2主要试剂及材料

RGDS、Nifedipine、ADP(美国 Sigma);Mouse IgM:FITC、PAC-1 FITC(FITC标记活化GP II b/11I a特异性抗体),CD61:PerCP,(美国 BDIS)。FACSort型流式细胞仪 (B-D 美国)。

1.3实验方法

1.3.1血小板膜糖蛋白GPIIb/IIIa测定ACD液抗凝静脉血2 mL,分成每份90 μL,加入ADP(5 μmol/L)孵育5min,实验组加入PAC-1:FITC、CD61:PerCP,对照组分别加入Mouse IgM:FITC、 CD61:PerCP 染色,室温下作用20 min ,立即加入2~8℃的%甲醛溶液1 mL,置 2~8 ℃冰箱内固定30 min,24 h内上机检测。每次检测时取5 μL标本,以CD61PerCP/SSC双参数设门,检测PAC-1阳性血小板的百分率[2]。

1.3.2RGDS、Nifedipine单独对血小板PAC-1表达率的作用 制备处理标本同上,静息组不加ADP直接测定, 对照组加入ADP,药物组分别加入5种不同浓度的 RGDS(50、100、200、400、800 μmol/L),Nifedipine(10、20、40、80、160 μmol/L)于37 ℃ 孵育10 min后加入ADP;其余各步骤相同。

1.3.3RGDS联合Nifedipine对血小板PAC-1表达率的联合作用 制备处理标本同上, 药物组同时加入RGDS(200 μmol/L)及 Nifedipine(160 μmol/L)于37 ℃孵育10 min后加入ADP;其余各步骤相同前。

1.3.4Nifedipine(160μmol/L)和RGDS(200 μmol/L)对血小板PAC-1 表达率的联合作用Nifedipine(160 μmol/L) 对血小板PAC-1抑制率为(44.35±22.81)%;RGDS(200 μmol/L) 对血小板PAC-1 的抑制率为(51.64±17.14)%;二者对血小板PAC-1的联合抑制率为(60.15±16.35)%,经析因设计的方差分析,二者的主效应与交互效应差异有统计学意义(P<0.05)。即二者对PAC-1 表达率的抑制存在协同作用。

1.4统计方法

计量资料的描述用均数±标准差(x±s)表示;PAC-1表达抑制率=[(对照组PAC-1表达率一用药后PAC-1表达率)/对照组PAC-1 表达率]x100%。不同浓度药物的单独效应用随机区组设计的方差分析;联合效应用析因设计的方差分析;所有数据均用spss 16.0统计软件处理。

2结果

2.1ADP诱导的血小板GPIIb/IIIa活化

正常人,静息状态下的血小板PAC-1表达率为(0.80±0.85)%;在ADP(5 μmol/L)激动下,PAC-1表达率增高,为(77.27±9.47) %。

2.2RGDS对血小板PAC-1 表达率的作用

5种不同浓度的 RGDS对PAC-1 表达率均有抑制作用,IC50值为206 μmol/L。随着RGDS浓度的增加,抑制作用增强,经随机区组设计的方差分析及SNK法多重对比,各浓度的效应有统计学意义,即RGDS能以浓度依赖性的方式抑制PAC-1 表达率。

2.3Nifedipine对血小板PAC-1表达率的作用

5种不同浓度的Nifedipine对PAC-1表达率均有抑制作用,IC50 值为178 μmol/L。随着Nifedipine浓度的增加,抑制作用增强,经随机区组设计的方差分析及SNK法多重对比,各浓度的效应有统计学意义,即Nifedipine能以浓度依赖性的方式抑制PAC-1 表达率。

3讨论

血小板活化的早期标志是血小板膜糖蛋白GPⅡb/11a复合物构型从静止状态转变为活化状态。本实验所采用GPIIb/IIIa受体单克隆抗体PAC-1,仅与活化GPIIb/IIIa结合,故其表达率反映GPIIb/IIIa的活化。该研究我们采用以上5个不同浓度的RGDS,发现RGDS能以浓度依赖性地方式抑制PAC-1表达率,随着浓度的增加,抑制率上升。RGDS能够产生上述效应,目前认为与以下方面有关:①GPIIb/IIIa活化的主要途径是依赖蛋白激酶C(PKC)对GPIIIa胞内区Ser/Thr残基磷酸化,产生“内向外”的活化信号实现[3];RGDS能抑制血小板GPIIb/IIIa受体磷酸化。②GPIIb/IIIa受体拮抗剂能够阻断纤维蛋白原与GPIIb/IIIa结合,能抑制GPIIb/IIIa 活化的“外向内”信号转导途径[4]。Ca2+激活PKC, PKC磷酸化GPIIb/IIIa胞内段及肌球蛋白轻链(MLC),使GPIIb/IIIa活化[5]。此外,Ca2+与钙调蛋白(CaM),组成Ca2+-CaM复合物,能激活肌球蛋白轻链激酶(MLCK),MLCK磷酸化MLC,骨架蛋白重组,收缩,使GPIIb/IIIa活化[6]。该研究采用以上5个不同浓度的Nifedipine,发现Nifedipine能浓度依赖性地抑制 PAC-1表达率,随着浓度的增加抑制率增强。

多年来,研究者一直探索血小板GPIIb/IIIa复合物与钙通道的关系。Tetsuro等采用电生理技术研究发现纤维蛋白原与GPIIb/IIIa后,钙内流增加;GPIIb/IIIa复合物解离或GPIIb/IIIa拮抗剂抑制钙内流。血小板膜糖蛋白GP II b/IIIa复合物膜胞内端除可与细胞骨架等结构蛋白结合外,还可与多种信号蛋白如整合素连接激酶(ILK)、蛋白激酶C(PKC) 等结合,对细胞内钙离子浓度的影响,除可通过对细胞膜上钙通道的作用外,也可影响细胞内钙库(如线粒体、 内织网等含钙高的细胞器)的释放[7]。研究发现在GPIIb/IIIa受体拮抗剂RGDS存在的情况下,血小板经凝血酶激活剂作用后的[Ca ]i 升高受到抑制[8]。以上可以看出,GPIIb/IIIa复合物参与调节钙通道活性,但二者具体的关系尚需进一步探讨。该实验观察了200 μmol/L的RGDS与160 μmol/L的Nifedipine对ADP (5 μmol/L)诱导的血小板AC-1表达率的联合效应。发现RGDS与Nifedipine对PAC-1表达率的主效应及交互效应差异有统计学意义(P<0.05),说明RGDS联合Nifedipine对GPIIb/IIIa活化的抑制存在协同作用。

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参考文献

[1]Casserly IP,Topol EJ. Glycoprotein Ⅱb/Ⅲa antagonist -from bench to practice Cell.Mol[J].life sci,2002,59: 478-450.

[2]Ogawa Taketoshi, Sugidachi Atsuhiro, Otsuguro Ken-ichi, et al. Asai, Fumitoshi Platelet α-granule secretion and its modification by SC-57101A[J]. a GPIIb/IIIa antagonist Biochemical Pharmacology Volume, 2002,10:1911-1918

[3]Van Wlilin G. Exposure of ligand binding site on platelet Glycoprotein IIb/IIIa by phosphorylation of GPIIIa subunit [J].Biochem J,1996, 314:769-779.

[4]王兆钺.血小板活化与信号传递[J].中华血液学杂志,2002,23(3):162-163.

[5]Brayant AE.Activation of platelet GPIIb/IIIa by phospholipase C from Clostridium per-fringens involves store-operated calcium entry[J].Infectious Dis, 2003,187(3):408.

[6]Jackson SP,Yap CL.Phosphoinositide 3-kinases and the regulation of platelet function[J].Biochem Soc Trans,2004,32(2):387.

[7]Chan WL,Holstein-Rathlou NH,Yip KP.Integrin mobilizes intracellular Cain renal vascular smootIl muscle cells[J].A m J Physiol Cell,2001,280(3):C593-603.

[8]李海明,尹松梅,谢双铮,等.GPIIb/IIIa受体拮抗剂RGDS对血小板聚集 和胞浆游离钙的影响 [J].中山大学学报:医学科学版,2009,30(3S):192-195.

(收稿日期:2013-12-24)